Fibras de quitosana-BSA bioinspiradas para aplicaciones en ingeniería de tejido del anillo fibroso de los discos intervertebrales

Hazel Peniche Agüero, Laurent David, Carlos Peniche Covas, Anayancy Osorio-Madrazo

Texto completo:

HTML

Resumen

Introducción: Recientemente, las fibras de quitosana están siendo utilizadas para fabricar o reforzar andamios o soportes para la ingeniería de tejidos, mejorando así sus propiedades biomecánicas. El hilado en disolución de la quitosana en interacción con proteínas no ha sido experimentado antes y puede ser utilizado para obtener fibras bioinspiradas del complejo quitosana-albúmina que tengan propiedades adecuadas y morfología similar a la del tejido fibroso presente en los discos intervertebrales y sirvan para su potencial reparación.
Objetivos: preparar y caracterizar fibras bioinspiradas del complejo de la quitosana con la albúmina de suero bovino por una técnica de hilado en húmedo para su uso potencial en la ingeniería de tejido del anillo fibroso de los discos intervertebrales.
Métodos: se estudiaron las condiciones experimentales para obtener complejos quitosana-proteína con propiedades en disolución apropiadas para el hilado. Se obtuvieron fibras de quitosana con albúmina de suero bovino por hilado en húmedo, se caracterizaron y se determinaron sus propiedades mecánicas.
Resultados: se obtuvieron fibras con una estructura microfibrilar similar a la quitina natural. Los espectros infrarrojos transformada de Fourier obtenidos por reflexión total atenuada evidencian la incorporación de albúmina de suero bovino en las fibras de quitosana. Las fibras de quitosana-albúmina poseen altos valores de módulo Young y resistencia a la fractura según revelan los ensayos micromecánicos.
Conclusiones: las fibras de quitosana-albúmina pueden ser obtenidas por el hilado en disolución de complejos de quitosana-albúmina sin el uso de ningún agente entrecruzante o postratamiento. Las fibras poseen propiedades mecánicas apropiadas para su uso como refuerzo de hidrogeles para aplicaciones como biomateriales para ingeniería de tejido de los discos intervertebrales. La albúmina de suero bovino fue usada como modelo de proteína globular, el próximo paso de este trabajo será el uso del colágeno para aplicación requerida.

Palabras clave: fibras de quitosana; complejo quitosana-BSA; hilado en húmedo; ingeniería de tejidos; discos intervertebrales.

Palabras clave

chitosan fibers; BSA-chitosan complex; wet spinning; tissue engineering; intervertebral discs

Referencias

Iatridis JC, Nicoll SB, Michalek AJ, Walter BA, Gupta MS. Role of biomechanics on intervertebral disc degeneration and regenerative therapies: What needs repairing in the disc andwhat are promising biomaterials for its repair? Spine J. 2013;13(3):243-62.

Bailey A, Araghi A, Blumenthal S, Huffmon GV. Prospective Multicenter, Randomized, Controlled Study of Anular Repair in Lumbar Discectomy. Spine. 2013;38(14):1161-9.

O'Connell GD, Malhotra NR, Vresilovic EJ, Elliott DM. The Effect of Discectomy and the Dependence on Degeneration of Human Intervertebral Disc Strain in Axial Compression. Spine. 2011;36(21):1765-71.

Pei BQ, Li H, Zhu G, Li DY, Fan YB, Wu SQ. The Application of Fiber-Reinforced Materials in Disc Repair BioMed Research International. 2013;2013:10. ID 714103.

Smith LJ, Nerurkar NL, Choi KS, Harfe BD, Elliott DM. Degeneration and regeneration of the intervertebral disc: lessons from development. Dis Model Mech. 2011;4(1):31-41.

O'Halloran DM, Pandit AS. Tissue-engineering approach to regenerating the intervertebral disc. Tissue Eng. 2007;13(8):1927-54.

Schollmeier G, Lahr-Eigen R, Lewandrowski KU. Observations on fiber-forming collagens in the anulus fibrosus. Spine J. 2000;25:2736-41.

Osorio-Madrazo A, Fratzl P, Davi L, Urban G, Montembault A, Crepet A, et al. Hydrogel nanocomposite biomaterials for intervertebral disc tissue engineering. Preparation, characterization and application. Bionanomaterials. 2015;16:236-55.

Visser J, Melchels FPW, Jeo E, vanBussel EM, Kimpton LS, Byrne HM, et al. Reinforcement of hydrogels using three-dimensionally printed microfibers. Nature Communications 2015;6:1-10.

Chanzy H. Chitin crystals. In: Domard A, Varum KM, Muzzarelli RAA, editors. Advances in Chitin Science Proceedings of the 7th International Conference on Chitin and Chitosan. Lyon: Jacques André Publisher; 1998. p. 11.

Muzzarelli RAA. Chitin New York: Pergamon Press; 1977.

Amidi M, Mastrobattista E, Jiskoot W, Hennink WE. Chitosan-based delivery systems for protein therapeutics and antigens. Adv Drug Deliv Rev. 2010;62:59-82.

Yuan Y, Wan ZL, Yang XQ, Yin SW. Associative interactions between chitosan and soy protein fractions: Effects of pH, mixing ratio, heat treatment and ionic strength. Food Research International. 2014;55:207-14.

Dresvyanina EN, Dobrovolskaya IP, Popryadukhin PV, Yudin VE, Ivankova EM, Elokhovskii VY, et al. Influence of spinning conditions on properties of chitosan fibers. Fibre Chemistry. 2013;44(5):280-3

Notin L, Viton C, David L, Alcouffe P, Rochas C, Domard A, et al. Morphology and mechanical properties of chitosan fibers obtained by gel-spinning: Influence of the dry-jet-stretching step and ageing. Acta Biomaterialia. 2006;2:387-402.

Bomshtein KG, Danilov VI, Pravetskii VN. Statics and dynamics of intervertebral discs. Mechanics of Composite Materials. 1980;15(4):419-23.

Sato K, Kikuchi S, Yonezawa T. In vivo intradiscal pressure measurement in healthy individuals and in patients with ongoing back problems. Spine J. 1999;24:2468-74.

Beachley V, Wen X. Fabrication of nanofiber reinforced protein structures for tissue engineering. Materials Science and Engineering C. 2009;29(8):2448-53.

Dutov P, Antipova O, Varma S, Orgel JPRO, JD. Schieber Djp. Measurement of Elastic Modulus of Collagen Type I Single Fiber. PLOS ONE. 2016. DOI:101371/journalpone0145711.



Licencia de Creative Commons
Esta obra está bajo una licencia de Creative Commons Reconocimiento-NoComercial 4.0 Internacional.